[1]李子杰,曹受金,周围.兔眼蓝莓‘提夫蓝’组培快繁[J].北方园艺,2022,(09):33-39.[doi:10.11937/bfyy.20214361]
 LI Zijie,CAO Shoujin,ZHOU Wei.Tissue Culture and Rapid Propagation of Vaccinium ashei ‘Tifblue’[J].Northern Horticulture,2022,(09):33-39.[doi:10.11937/bfyy.20214361]
点击复制

兔眼蓝莓‘提夫蓝’组培快繁

参考文献/References:

<0.05)。此外,随着IBA浓度的增加,生根数量增加,但增加幅度差异不显著(P>0.05)。从表3还可以看出,在0.5 mg?L-1 IBA的1/2WPM培养基中添加不同浓度的AC对兔眼蓝莓试管苗生根有明显的促进作用,生根率和有效生根率均高达82%以上;生根数量随处理浓度升高而逐渐增多,200 mg?L-1 AC处理组,生根数量每株达到6.32条;根长呈先升高后降低的趋〖FL)〗〖KH-1D〗〖JZ(〗表2生长调节剂种类对丛生芽增殖的影响〖HT6SS〗Table 2Effects of different growth regulators on proliferation of shoot cluster〖JZ)〗〖HT6”SS〗〖BG(〗〖BHDFG10mm,WK18mm,WK24mm\.3,WK36mmDW,WKDWW〗编号No.〖〗NAA/(mg?L-1)〖〗ZT/(mg?L-1)〖〗6-BA/(mg?L-1)〖〗增殖系数Proliferation coefficient〖〗平均株高Average plant height/cm〖BHDG5mm〗1〖〗0.1〖〗1.0〖〗0〖〗3.97±0.22b〖〗4.51±0.59a〖BHDW〗2〖〗0.1〖〗1.5〖〗0〖〗5.53±0.31a〖〗5.15±0.64a〖BH〗3〖〗0.1〖〗2.0〖〗0〖〗4.12±0.25b〖〗4.63±0.41a〖BH〗4〖〗0〖〗1.0〖〗0〖〗4.21±0.17b〖〗2.09±0.36c〖BH〗5〖〗0〖〗1.5〖〗0〖〗4.39±0.18b〖〗2.31±0.40c〖BH〗6〖〗0〖〗2.0〖〗0〖〗4.08±0.30b〖〗2.15±0.31c〖BH〗7〖〗0.1〖〗0〖〗0.5〖〗2.84±0.14c〖〗3.25±0.38b〖BH〗8〖〗0.1〖〗0〖〗1.0〖〗2.51±0.11c〖〗3.13±0.27b〖BH〗9〖〗0.1〖〗0〖〗1.5〖〗1.79±0.23c〖〗3.07±0.45b〖BG)F〗〖HT〗〖KH-*2/3〗〖TP6-2.tif,BP#〗〖TS(3〗〖JZ(〗图2丛生芽增殖培养Fig.2Proliferation culture of shoot cluster〖HT〗〖JZ)〗〖TS)〗〖KH-*2〗〖JZ(〗表3IBA不同浓度对组培生根的影响〖HT6SS〗Table 3Effects of different concentrations of IBA on rooting in tissue culture〖JZ)〗〖HT6”SS〗〖BG(〗〖BHDFG10mm,WK11mm,WK20mm\.2DW,WK28mm\.3DW,WKDWW〗编号No.〖〗IBA/(mg?L-1)〖〗AC/(mg?L-1)〖〗生根率Rooting rate/%〖〗有效生根率Effective rooting rate/%〖〗根长Root length/cm〖〗生根数量Rooting number〖BHDG5mm〗1〖〗0.1〖〗0〖〗41.68±2.14c〖〗28.33±1.59c〖〗4.65±0.27a〖〗3.76±0.39c〖BHDW〗2〖〗0.3〖〗0〖〗44.15±2.39c〖〗31.48±2.01c〖〗4.24±0.39a〖〗4.12±0.27c〖BH〗3〖〗0.5〖〗0〖〗55.22±2.41b〖〗42.15±2.56b〖〗3.32±0.34bc〖〗4.21±0.46c〖BH〗4〖〗0.8〖〗0〖〗39.47±2.02c〖〗26.57±1.24c〖〗3.10±0.21bc〖〗4.31±0.60c〖BH〗5〖〗1.0〖〗0〖〗37.34±1.95c〖〗23.69±1.47c〖〗2.87±0.36c〖〗4.38±0.35c〖BH〗6〖〗0.5〖〗100〖〗82.69±2.46a〖〗82.69±2.46a〖〗4.17±0.18a〖〗5.26±0.59b〖BH〗7〖〗0.5〖〗200〖〗87.16±1.95a〖〗87.16±1.95a〖〗4.39±0.39a〖〗6.32±0.37a〖BH〗8〖〗0.5〖〗300〖〗84.32±1.32a〖〗84.32±1.32a〖〗3.96±0.34ab〖〗5.31±0.82b〖BG)F〗〖HT〗〖TP6-3.tif,BP#〗〖TS(3*2〗〖JZ(〗图3IBA不同浓度对组培生根的影响Fig.3Effects of different concentrations of IBA on rooting in tissue culture〖HT〗〖JZ)〗〖TS)〗〖FL(2K2〗势,200 mg?L-1的AC处理组根系最长(4.39 cm)。综合分析认为,带腋芽的茎段接种到1/2 WPM+ 0.5 mg?L-1IBA+200 mg?L-1 AC的培养基上培养,是诱导瓶内生根的最佳的培养方式,其生根率、有效生根率、根长和生根数量分别达87.16%、87.16%、4.39 cm和6.32条,且根系较发达、粗壮,见图3。〖BT2〗2.4生根苗室外移栽驯化蓝莓瓶内生根苗经炼苗移栽到5种不同基质上,40 d后统计成活率以及生长量。从表4可以看出,移栽基质苔藓成活率最高,达93.47%,蓝莓苗叶色浓绿,长势健壮。效果其次的是泥炭与珍珠岩组合及泥炭与河沙组合,其成活率分别为78.39%和74.76%,长势健壮、叶片较绿。效果最差的是泥炭与园土组合及泥炭与蛭石组合,其成活率分别为64.23%和62.45%,长势较健壮、叶片淡黄。可见,苔藓为蓝莓组培苗的较佳移栽基质(图4)。〖LL〗〖TP6-4.tif,BP#〗〖TS(4〗〖JZ(〗图4生根苗移栽驯化Fig.4Transplanting and domestication of rooted seedlings〖HT〗〖JZ)〗〖TS)〗〖BT1〗3讨论与结论目前,兔眼蓝莓的组培快繁系统已在MS、1/2MS、WPM、1/2WPM等基础培养基上成功建立。兔眼蓝莓的‘Britewell’‘Climax’在WPM培养基上具有较高的诱导度和生长系数[6]。但〖FL)〗〖SD33*2〗〖JZ(〗表4生根苗移栽驯化〖HT6SS〗Table 4Transplanting and domestication of rooted seedlings〖JZ)〗〖HT6”SS〗〖BG(〗〖BHDFG10mm,WK53mm,WK35mm\.2DW,WKW〗移栽基质Transplanting medium〖〗移栽数量Transplanting number〖〗成活率Survival rate/%〖〗生长状况Growth conditions〖BHDG5mm〗V(泥炭Peat)∶V(河沙River sand)=1∶1〖〗100〖〗74.76±2.45b〖〗长势健壮、叶片较绿〖BHDW〗V(泥炭Peat)∶V(园土Garden soil)=1∶1〖〗100〖〗64.23±3.16c〖〗长势较健壮、叶片淡黄〖BH〗V(泥炭Peat)∶V(蛭石Vermiculite)=2∶1〖〗100〖〗62.45±2.98c〖〗长势较健壮、叶片淡黄〖BH〗V(泥炭Peat)∶V(珍珠岩Perlite)=2∶1〖〗100〖〗78.39±3.47b〖〗长势健壮、叶片较绿〖BH〗苔藓 Moss〖〗100〖〗93.47±1.62a〖〗长势健壮、叶片浓绿〖BG)F〗〖HT〗〖KH-*2〗〖FL(2K2〗‘Powderblue’‘Premier’在1/2 WPM具有更好的增殖和生根效果[17],所以,该试验采用1/2WPM作为基本培养基。寻找合适的杀菌剂及灭菌时机是达到较高灭菌效果的必要条件。以蓝莓茎段为外植体进行消毒处理时,可先用70%~75%酒精溶液灭菌15~30 s,再用0.1% HgCl2灭菌8 min达到较好效果,兔眼蓝莓茎段污染率较低(14.3%),成活率达85.7%,但之后的诱导率偏低[10]。蓝莓外植体也可以用75%酒精溶液处理50 s,再用10% NaClO处理15 min,降低污染率的同时也能保证相对较高的诱导率,最后诱导出的材料最多[19]。当蓝莓外植体采用70%酒精溶液浸泡30 s,2% NaClO溶液浸泡10 min,0.1% HgCl2溶液浸泡10 min后,污染率最低,成活率最高[20]。依据前者试验结果,该研究选用10% NaClO溶液或0.1% HgCl2溶液作为消毒剂进行对比,使用10% NaClO溶液处理时间为15 min时,消毒效果最好,污染率仅有17.34%,腋芽诱导率为68.36%,且平均萌芽数为9.71个,而使用0.1% HgCl2溶液消毒,蓝莓茎段的诱导率和萌芽数方面均不如前者,消毒时间过长时,有一定数量外植体直接死亡,且消毒后难以去除残余的汞,导致后期存活率降低[21]。因此,以10% NaClO溶液对蓝莓外植体消毒15 min的效果最佳。细胞分裂素对蓝莓组培苗腋芽的诱导增殖和生长均起重要作用[22]。研究结果显示,1/2WPM基础培养基对蓝莓组培苗腋芽诱导效果显著好于WPM,这可能是由于盐离子的浓度过高,造成了较高的渗透压,从而一定程度上抑制了植物细胞的分裂分化[6]。ZT诱导腋芽萌发效果要好于IBA,ZT与IBA组合使用,腋芽的萌发率与萌发数均高于ZT与IAA的组合[13],该试验采用1.5 mg?L-1 ZT和0.2 mg?L-1 IBA组合,诱导率达68.36%。6-BA对提高蓝莓生长、增殖的速率效果显著低于添加ZT,并且在1.5 mg?L-1 ZT基础上,添加0.1 mg?L-1 NAA有利于提高增殖系数和植株高度[6]。ZT对蓝莓丛生芽的诱导和增殖具有显著效果。添加ZT通常能够使得植物长势更为优异,如在其它培养条件适宜的情况下,ZT能明显影响蓝莓离体繁殖的增殖效率和植株长势[ 23]。同时ZT是不定芽增殖培育中的关键因素,其浓度对叶片数、叶长和增殖系数均有显著的影响,而NAA浓度仅〖JP+2〗对苗高影响显著,不是蓝莓增殖培育中的主要影响因子[5]。该研究表明蓝莓‘提芙蓝’丛生芽增殖培养的最适培养基为〖JP〗WPM+0.1 mg?L-1 NAA+1.5 mg?L-1 ZT。生根困难是蓝莓组织培养过程中,需要克服的一个关键问题。影响蓝莓生根培育的因素有许多,包括了基础培养基类型、植物激素种类和含量等,以及各因素之间的相互影响作用,其复杂程度较高[24]。该研究发现,将蓝莓‘提芙蓝’带腋芽的茎段直接在0.1~1.0 mg?L-1 IBA的培养基中培养时,生根率较低(最高为55.22%),有效生〖JP3〗根率(平均生根数≥3条)更低(最高为42.15%);在〖JP〗0.5 mg?L-1 IBA的培养基中添加200 mg?L-1活性炭(AC),生根率及有效生根率最高达87.16%,且生根条数较多,根系粗壮,优于直接在IBA的培养基中培养[11,17]。该研究结果表明,蓝〖JP3〗莓‘提芙蓝’生根培养的最适培养基为1/2WPM+〖JP〗0.5 mg?L-1 IBA+200 mg?L-1 AC。不同的移植基质对蓝莓成活率的影响也不同,例如当蓝莓的移植基质是草炭∶园土∶珍珠岩=2∶1∶0.5时,生根苗移栽成活率达到85.67%[14];移植基质为腐殖土∶园土=3∶1,保持相对湿度84%,最高温度35 ℃时,移植成活率超过85%[18]。生根苗在河沙∶蛭石∶珍珠岩=1∶1∶1的混合基质成活率可达92.22%,但移栽苗在苔藓中的长势最好[19],该研究表明苔藓为蓝莓组培苗的较佳移栽基质,成活率高达93.47%,蓝莓苗叶色浓绿,长势健壮。〖BT5〗参考文献〖HT6SS〗〖WTBZ〗[1]方瑞征.中国越桔属的研究[J].云南植物研究,1986,8(3):239-258.[2]BORNSEK S M,ZIBERNA L,POLAK T,et al.Bilberry and blueberry anthocyanins act as powerful intracellular antioxidants in mammalian cells[J].Food Chemistry,2012,134(4):1878-1884.[3]KADER F,ROVEL B,GIRARDIN M,et al.Fractionation and identification of the phenolic compounds of highbush blueberries (Vaccinium corymbosum L.)[J].Food Chemistry,1996,55(1):35-40.[4]何梦铃,杨娜,刘小珍,等.兔眼蓝莓组培体系建立及多倍体诱导研究[J].现代农业科技,2019(23):59-61.[5]朱芳明,张太奎,刘惠民,等.兔眼蓝莓快繁技术研究[J].西南林业大学学报,2016,36(3):73-79.[6]李森,高丽霞,刘念,等.兔眼蓝莓 ‘顶峰’的离体快繁技术研究[J].北方园艺,2015(24):101-103.[7]孙永平,曹荣祥,郭成宝,等.兔眼蓝莓外植体启动培养研究[J].江苏农业科学,2015,43(8):45-46.[8]朱宏芬,沈岚,黄坚,等.兔眼蓝莓“灿烂”组织培养与植株再生研究[J].北方园艺,2012(19):105-107.[9]房小晶,周艳,李永霞,等.不同消毒方式对兔眼蓝莓初代培养的影响研究[J].北京农业,2014(18):16.[10]郭丽,郑志新,武延生.兔眼蓝莓初代培养的建立[J].现代农村科技,2017(12):57-58.[11]郑理乔,黄成林,刘华,等.兔眼蓝莓组织培养过程中褐化与生根问题的探讨[J].安徽农业大学学报,2012,39(5):777-782.[12]田如英,刘燕,祁翔,等.兔眼蓝莓外植体抗褐化技术初探[J].北方园艺,2009(12):88-90.[13]郑伟尉,吕锡山,慎家辉,等.兔眼蓝莓“园蓝”离体培养增殖技术研究[J].中国南方果树,2013,42(1):89-91.[14]涂俊凡,秦仲麒,李先明,等.兔眼蓝莓组织培养与快繁技术研究[J].安徽农业科学,2012,40(28):13725-13728.[15]王大平.兔眼蓝莓试管苗生根培养的研究[J].北方园艺,2010(16):140-142.[16]吴光洪,孙英坤,陈林敬,等.兔眼蓝莓 ‘粉蓝’叶片直接诱导丛生芽再生技术体系的建立[J].植物生理学报,2016,52(3):372-380.[17]熊翠林.兔眼蓝莓组培苗瓶内生根技术研究[J].安徽农学通报,2018,24(6):46-48.[18]罗智勇,周俊,文斌,等.兔眼蓝莓灿烂的快繁技术优化[J].中国果菜,2013(11):18-21.[19]夏科,赵志国,吴巧芬,等.南高丛蓝莓 ‘奥尼尔’工厂化组培快繁技术研究[J/OL].广西植物,(2021-03-26)[2021-10-29].https://kns.cnki.net/kcms/detail/detail.aspx?dbcode=CAPJ &dbname=CAPJLAST &filename=〖JP2〗GXZW20210324007& 〖JP〗uniplatform=NZKPT&v=nld-w7thijaoGgTwskX0mjO4vE2_NB0vOoEEecN4U70vN01ksc S5FWNihH9BXpIu.[20]陶兴魁,高贵珍,赵亮,等.几种方法对蓝莓外植体消毒的比较研究[J].淮北师范大学学报(自然科学版),2013,34(2):39-41.[21]周权男,姜泽海,李哲,等.植物组织培养中污染控制技术的研究现状[J].热带农业科学,2012,32(9):53-56.[22]DEBNATH S C.A two-step procedure for adventitious shoot regeneration on excised leaves of lowbush blueberry[J].In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant,2009,45(2):122-128.[23]李丽容,金开正,赖联森.玉米素对蓝莓组培增殖生长的影响研究[J].安徽农业科学,2013,41(30):11961-11962.[24]阳翠,王军,董顺文,等.培养基组分对蓝莓组培苗瓶内生根的影响[J].植物生理学报,2016,52(9):1438-1442.

相似文献/References:

[1]白宇清,王定跃,谢利娟.毛棉杜鹃茎段组织培养技术的研究[J].北方园艺,2020,44(08):66.[doi:10.11937/bfyy.20192114]
 BAI Yuqing,WANG Dingyue,XIE Lijuan.Study on the Stem in vitro Culture for Rhododendron moulmainense[J].Northern Horticulture,2020,44(09):66.[doi:10.11937/bfyy.20192114]

备注/Memo

第一作者简介:李子杰(1995-),男,硕士研究生,研究方向为观赏植物栽培与育种。E-mail:1134670214@qq.com.责任作者:曹受金(1972-),男,博士,教授,硕士生导师,现主要从事观赏植物栽培与育种等研究工作。E-mail:932143364@qq.com.基金项目:江苏省科技计划资助项目(SZ-SQ2019003)。收稿日期:2021-10-29

更新日期/Last Update: 2022-06-13